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FL3500/F快速版葉綠素熒光儀

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北京易科泰生態技術有限公司

捷克

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FL3500/F快速版葉綠素熒光儀

FL 3500/F快速版葉綠素熒光儀的時間分辨率在標準版的基礎上提高到1 μs,可精確捕捉和描繪快速熒光瞬變過程,使得運用PAM技術對OIJP曲線和光閃熒光誘導的快速動力學測量更加準確高效,能夠更加精確地計算各種相關參數。

該系統可用于藍綠藻或綠藻等微藻,葉綠體或類囊體懸浮物,乃至葉片的光合作用研究的強大科研工具。其核心結構是包含了一個懸浮液標準樣品杯的光學測量頭,內置3LED光源和1500 kHz/16 AD 轉換的PIN二極管信號檢測器。AD轉換的增益和積分時間可以通過軟件控制。檢測器測量葉綠素熒光信號的時間分辨率可高達1 μs 。系統配置的光合放氧測量模塊,使其可以對放氧復合物的狀態轉換做更深入研究。

應用領域:

· 植物光合特性和代謝紊亂篩選

· 生物和非生物脅迫的檢測

· 植物抗脅迫能力或者易感性研究

· 代謝混亂研究

· 光合系統工作機理研究

· 受脅迫植物光合生理應對策略研究

典型樣品:

· 藍藻(藍細菌)

· 綠藻

· 葉綠體懸浮物

· 類囊體懸浮物

· 植物碎片

功能特點:

· 具備雙通道測量控制,可以與各種測量單元如標準版、快速版、葉夾式及水下測量頭等配合使用,各版本的測量頭可互換使用

· 內置多種可用戶自行修改的測量程序,涵蓋目前國際上對于葉綠素熒光的各種一般性研究和深入機理研究

· 配備單翻轉光(STF),可進行QA再氧化動力學、S狀態轉換等光合機理研究

· 配備高靈敏度檢測器,可進行OJIP快速熒光動力學分析

· 可控制測量樣品的溫度并進行磁力攪拌

技術參數:

· 實驗程序:葉綠素熒光誘導測量;PAM(脈沖調制)測量;OJIP快速熒光動力學測量;QA再氧化動力學;S狀態轉換;葉綠素熒光淬滅;光系統II有效天線色素大小

  • 熒光參數:F0FmFvF0Fm’Fv’QY(II)NPQΦPSIIFv/FmFv’/Fm’RfdqNqPETR50多項葉綠素熒光參數與圖像,OJIP曲線與F0FJFiFmFvVJViFm / F0Fv / F0Fv / FmM0AreaFix AreaSMSSNPhi_P0Psi_0Phi_E0Phi_D0Phi_PavABS / RCTR0 / RCET0 / RCDI0 / RC20多項相關參數

· 時間分辨率(采樣頻率):高靈敏度檢測器,時間分辨率達4μs

· 控制單元:雙通道通用高度精確性自動微處理器,可以與各種測量單元如標準版、快速版、葉夾式及水下測量頭等配合使用(無需另行購買控制單元)

· 測量光閃:標準為波長617nm的橙光或455nm的藍光,光閃時間25μs

· 單翻轉飽和光閃:標準光源為630nm的紅光,光閃時間2050μs

· 持續光化學光:標準為630nm的紅光或455nm的藍光,**光強2500 μmol(photons)/m2.s

· 遠紅外光源(選配):用于激發光系統I,波長735nm

· 氧電極(選配):測量藻類的氧氣釋放

· 每組lED光源強度和時間可通關軟件調控,同時光源可根據研究要求選配

· 溫度控制:TR 2000溫度調節器,控溫范圍070,精確度0.1

· 電磁攪拌:8mm×3mm標準磁力棒

· 樣品試管:底面積10×10mm,容積4ml

· AD轉換器:試管式為500 kHz/16bit

· FluorWin軟件:定義或創建實驗方案、光源控制設置、數據輸出、分析處理和圖表顯示

典型應用:熒光誘導過程分析

產地:捷克

參考文獻:

§ Functioning of the Bidirectional Hydrogenase in Different Unicellular Cyanobacteria, é Kiss, et al, 2013. Research for Food, Fuel and the Future

§ Excess Ca2+does not alleviate but increases the toxicity of Hg2+ to photosystem II in Synechocystis sp.(Cyanophyta), D Zhang, et al, 2013. Ecotoxicology and environmental safety

§ Inhibition of the Water Oxidizing Complex of Photosystem II and the Reoxidation of the Quinone Acceptor QA? by Pb2+, A Belatik, et al, 2013. PloS one

§ Destabilization of the Oxygen Evolving Complex of Photosystem II by Al3+, I Hasni, et al, 2013. Photochemistry and Photobiology

§ Effects of Sb (V) on growth and chlorophyll fluorescence of Microcystis aeruginosa (FACHB–905),S Wang, et al, 2012. Current Microbiology

§ Correlations between the temperature dependence of chlorophyll fluorescence and the fluidity of thylakoid membranes, A Tovuu, et al, 2012. Physiologia Plantarum

§ Developmental Defects in Mutants of the PsbP Domain Protein5 inArabidopsis thaliana. JL Roose, et al, 2011. PloS one

§ Inhibition of photosystems I and II activities in salt stress–exposed Fenugreek (Trigonella foenum graecum). M Zaghdoudi, et al, 2011. Journal of Photochemistry and Photobiology B: Biology

§ Productivity correlated to photobiochemical performance of Chlorella mass cultures grown outdoors in thin–layer cascades. J Masojídek, et al, 2011. Journal of Industrial Microbiology & Biotechnology

§ Binding Stoichiometry and Affinity of the Manganese–Stabilizing Protein Affects Redox Reactions on the Oxidizing Side of Photosystem II. JL Roose, et al, 2011. Biochemistry

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